[摘 要] 目的：开发靶向成纤维细胞活化蛋白（FAP）的CAR-T细胞，评价其通过重塑肿瘤微环境（TME）抑制乳腺癌生长的能力。方法：将识别FAP不同抗原表位的纳米抗体VHH1和VHH2串联，设计两种胞外识别区排列顺序不同的FAP-CAR1（VHH1-Linker-VHH2）和FAP-CAR2（VHH2-Linker-VHH1），构建以二价FAP抗体为胞外识别域的CAR，将其分别克隆至逆转录病毒载体并完成病毒包装。分离小鼠淋巴细胞，经抗CD3/CD28抗体激活后进行转导，制备FAP-CAR1-T和FAP-CAR2-T细胞。通过实时无标记动态细胞分析（RTCA）、流式细胞术（FCM）评估FAP-CAR-T细胞的靶向杀伤活性，ELISA检测其激活后IL-2分泌水平。分别用FAP-CAR1-T细胞（FAP-CAR-T组）、HER2-CAR-T细胞（HER2-CAR-T组）及未转导T细胞（Mock-T组）治疗4T1-HER2荷瘤小鼠，分析FAP-CAR-T对肿瘤生长的抑制作用，并通过免疫组织化学（IHC）检测肿瘤组织中T细胞浸润情况。进一步通过转录组分析差异表达基因。结果：FAP-CAR1-T与FAP-CAR2-T细胞体外扩增稳定，CAR阳性率 > 60%。两者均能特异、高效杀伤过表达鼠源FAP的小鼠成纤维细胞NIH3T3-mFAP，且FAP-CAR1-T细胞在扩增和分泌IL-2方面优于FAP-CAR2-T细胞，因此选用FAP-CAR1-T细胞进行后续体内实验。在小鼠4T1-HER2皮下移植瘤模型中，FAP-CAR-T治疗组小鼠肿瘤生长速度显著低于Mock-T组（P < 0.05），与HER2-CAR-T组肿瘤生长速度相当（P > 0.05）；与Mock-T组相比，FAP-CAR-T治疗组小鼠肿瘤组织中CD3+ T细胞浸润增加，胶原沉积面积减少（P < 0.001或P < 0.01）。转录组分析结果显示，FAP-CAR-T组相较Mock-T组的差异表达基因富集于细胞外基质、免疫应答等GO条目及ECM-受体相互作用等KEGG通路。结论：FAP-CAR-T细胞通过特异性靶向FAP相关基质细胞，重塑肿瘤微环境，显著抑制乳腺癌生长，且在肿瘤体积控制上与HER2-CAR-T细胞相比无统计学差异。