[摘 要] 目的：通过构建表达IL-12的小鼠CAR-T细胞，探讨经尾静脉将其输注于小鼠体内建立细胞因子释放综合征（CRS）模型的方法。方法：构建基于靶向鼠源CD19的CAR分子，包装逆转录病毒载体并感染小鼠T细胞构建mCD19-CAR-T、mCD19/IL-12-CAR-T细胞。通过构建小鼠体内胰腺癌Panc02-CD19细胞移植瘤模型，检测mCD19/IL-12-CAR-T细胞的抗肿瘤活性，ELISA法检测两种CAR-T细胞IL-12和IFN-γ分泌水平；经小鼠尾静脉输注mCD19/IL-12-CAR-T 细胞构建CAR-T细胞CRS小鼠模型，流式细胞术检测小鼠血清中IL-6、MCP-1、IL-1、IL-10、TNF-α、IFN-γ等细胞因子的含量，H-E染色法观察荷瘤小鼠肝、脾、肺和肾的病理组织学变化。结果：经过培养扩增的mCD19/IL-12-CAR-T细胞能有效分泌IL-12，CAR阳性率达（56.9±5.4）%；与非靶细胞Panc02或靶细胞Panc02-CD19共培养时，均能高分泌IFN-γ。成功构建小鼠胰腺癌Panc02-CD19细胞移植瘤模型，经小鼠尾静脉注射1×106个mCD19/IL-12-CAR-T细胞能显著抑制移植瘤的生长，但未能诱发严重CRS；输注2×106个mCD19/IL-12-CAR-T细胞后，小鼠出现体质量减轻、血清炎性因子水平升高、组织损伤，最终导致死亡等一系列典型CRS表现。结论：成功构建IL-12-CAR-T细胞诱发的小鼠CRS模型，其稳定性好、重复性高，具有广泛的应用前景。

目的：通过向C57Bl/6J小鼠腹腔注射IFN-γ腺病毒（Ad-mIFN-γ）建立细胞因子释放综合征（CRS）的动物模型。方法：构建Ad-mIFN-γ及对照Ad-lacZ腺病毒载体，分别以MOI=100体外转染小鼠腹腔巨噬细胞，流式细胞术检测其对细胞mIFN-γ分泌的影响。将40只雌性C57Bl/6J小鼠按随机数字表法分为对照组、载体对照组、病毒低、中、高剂量组（每组8只），分别向各组小鼠腹腔注射PBS（200 μL）、Ad-lacZ（2×107 PFU/只）、Ad-mIFN-γ（5×106 PFU/只）、Ad-mIFN-γ（1.5×107 PFU/只）和Ad-mIFN-γ（2×107 PFU /只）。每日观测小鼠的体质量及生存情况；第3天时采用流式细胞术检测小鼠外周血和脾内单核细胞（CD11b+）、巨噬细胞（CD11b+/CD86+）比例，免疫荧光染色法检测脾内CD11b+的单核细胞比例；第9天时采用流式细胞术检测小鼠血清中细胞因子的分泌水平；第14天，采用颈椎脱臼法处死小鼠，H-E染色法观察小鼠肝、脾、肺和肾的病理和组织学变化。结果： Ad-mIFN-γ体外感染小鼠腹腔巨噬细胞，在第3天检测到巨噬细胞分泌mIFN-γ达到峰值（118.34±2.90）pg/mL，并在一周内持续高分泌mIFN-γ，Ad-lacZ对照组IFN-γ分泌水平较低后，第3天时为（0.17±0.08）pg/mL。小鼠腹腔注射Ad-mIFN-γ后，在14 d内病毒低、中剂量组无小鼠死亡，病毒高剂量组小鼠体质量持续减轻（P<0.001）；第3天，病毒高剂量组小鼠外周血和脾组织内单核细胞、巨噬细胞比例较对照组和中剂量组均显著增加（P<0.05或P<0.01）；第9天，病毒低、中、高剂量组小鼠血清中mIFN-γ、IL-6、单核细胞趋化蛋白-1（MCP-1）、IL-1、TNF-α等细胞因子的水平均显著升高（P<0.001）；10 d内病毒高剂量组小鼠死亡率达100%。组织病理检测可见病毒高剂量组小鼠的肝、脾、肺、肾组织有明显损伤。结论： Ad-mIFN-γ体外感染小鼠原代腹腔巨噬细胞后，可以快速分泌mIFN-γ；腹腔注射高剂量（2×107 PFU/只）Ad-mIFN-γ导致小鼠出现CRS典型表现，可作为CAR-T细胞治疗诱发CRS的动物模型。